細胞培養是指在人工創(chuàng )造的與體內生長(cháng)環(huán)境相似，如無(wú)菌條件、適宜的溫度、pH、CO2環(huán)境和適宜營(yíng)養條件下，使細胞生長(cháng)、繁殖并維持主要結構和功能的技術(shù)。

細胞培養是細胞生物學(xué)研究方法中最常用也是最重要的技術(shù)之一，在現代醫學(xué)、生物科學(xué)、農業(yè)科學(xué)等領(lǐng)域被廣泛應用以提供研究模型和實(shí)驗材料。在細胞培養過(guò)程中，完全培養基對細胞生長(cháng)狀態(tài)起到關(guān)鍵作用，決定實(shí)驗成功與否。而血清是完全培養基中的關(guān)鍵成分之一，除為細胞生長(cháng)提供基本營(yíng)養物質(zhì)、結合蛋白、一些參與解毒代謝的微量元素和可起到中和保護的酶類(lèi)之外，還可以保護細胞免受機械損傷，因此被業(yè)內認為是細胞增殖過(guò)程中最重要的試劑。在生命科學(xué)領(lǐng)域的細胞培養技術(shù)中，動(dòng)物血清的應用十分廣泛，特別是牛來(lái)源血清。而牛源血清又分為胎牛血清、新生牛血清和小牛血清，它們的區別方式主要由于牛齡和采血方式不同，其中胎牛血清因其抗體水平含量低對后續實(shí)驗結果影響小、生長(cháng)因子含量水平高利于細胞增殖而應用最廣。因此關(guān)注胎牛血清的品級、質(zhì)量以及使用過(guò)程的一些注意事項，會(huì )對實(shí)驗結果起到直接影響作用，并可以確?？蒲腥藛T在實(shí)驗操作過(guò)程中的安全性。

今天我們就來(lái)看看在細胞培養過(guò)程中血清使用方面常見(jiàn)的問(wèn)題，如：血清儲存條件、如何程序解凍、細胞污染與血清之間的關(guān)系、傳說(shuō)中的“黑膠蟲(chóng)”是什么以及血清熱滅活是否有必要等等，“工欲善其事，必先利其器”，通過(guò)今天的解析與學(xué)習可以讓我們在做細胞培養相關(guān)實(shí)驗時(shí)事半功倍！那我們就開(kāi)始吧~

 Q1：血清長(cháng)期儲存的條件和方法是什么？

A1：血清如需長(cháng)期保存，則必須儲存于-10℃或更低溫冰箱中，建議存放于-20℃的冰箱中。研究表明儲存在-80℃條件下的血清在性能方面變化不大，但由于解凍時(shí)溫差過(guò)大，會(huì )導致析出更多沉淀，使得背景雜亂，因此血清長(cháng)期保存不建議處于-80℃條件下。如果近期會(huì )頻繁使用血清，我們建議不要在4℃條件下存放超過(guò)1個(gè)月，若一次無(wú)法用完整瓶建議分裝后保存，且要避免反復凍融。另外，血清冰凍后體積會(huì )增加約10%，因此血清分裝時(shí)請留意預留一定的體積空間。

 Q2：如何進(jìn)行血清的程序性解凍？血清才不會(huì )使產(chǎn)品質(zhì)量受損？

A2：程序性解凍血清可以確保血清制品質(zhì)量的穩定性，且不會(huì )因為溫差過(guò)大而析出過(guò)多蛋白等沉淀。程序性解凍方法是于實(shí)驗開(kāi)始之前將冷凍的血清置于4℃冰箱中融解，并且在解凍過(guò)程中每隔1小時(shí)搖勻一次，使溫度與成分均一，減少沉淀析出，直至全部解凍，然后再移入室溫條件下使用。

 Q3：血清解凍后發(fā)現絮狀沉淀該如何處理？

A3：造成血清發(fā)生絮狀沉淀的原因主要是血清解凍過(guò)程中溫差帶來(lái)了脂蛋白變性和纖維蛋白析出，沉淀本身不會(huì )影響血清質(zhì)量，也不會(huì )對實(shí)驗結果造成影響。但如必須處理沉淀，則可通過(guò)離心方式去除，如500-1000×g離心5-10 min。

 Q4：血清沉淀是什么？

A4：用于細胞培養的胎牛血清及其他血類(lèi)制品中均存在各種類(lèi)型的沉淀，如纖維蛋白和磷酸鈣等。一些絮狀沉淀主要就是纖維蛋白，通常我們肉眼可見(jiàn)，大小在1-2mm之間；而磷酸鈣在顯微鏡下觀(guān)察呈現布朗運動(dòng)的小黑點(diǎn)，通常被誤認為是微生物污染。血清沉淀往往比較難以預測和控制，但幸運的是這些沉淀不會(huì )影響血清品質(zhì)。

 Q5：血清中的小黑點(diǎn)是“黑膠蟲(chóng)”么？

A5：血清解凍過(guò)程溫差過(guò)大、經(jīng)反復凍融或通過(guò)熱滅活處理后更容易產(chǎn)生沉淀，這些沉淀物在鏡下觀(guān)察時(shí)有一些會(huì )呈現以布朗運動(dòng)的小黑點(diǎn)，業(yè)內流行一種“黑膠蟲(chóng)”污染的說(shuō)法，但“黑膠蟲(chóng)”一直以來(lái)都是極為神秘的存在，至今科學(xué)家們也沒(méi)有完整的實(shí)驗結果可以證實(shí)它究竟是一種生物還是非生物，更有人認為“黑膠蟲(chóng)”是血清的原蟲(chóng)，或誤以為是細菌或真菌污染。但科學(xué)家通過(guò)進(jìn)一步的研究發(fā)現它們更可能是血清中的蛋白結晶。這種結晶可能為蛋白析出，如纖維蛋白原凝結成纖維蛋白；或是鹽析出，如磷酸鈣等；也有一些是膽固醇和脂肪酸。以下圖片就證實(shí)了這一說(shuō)法，如纖維蛋白和磷酸鈣。

Q6：如何判斷血清污染？

A6：

（1）首先檢查并判斷外包裝是否有破損，一般瓶身破損的血清發(fā)生污染的可能性極大；

（2）將血清接種到血酯板上，培養后看是否有菌落形成；

（3）可通過(guò)質(zhì)量檢測試劑盒檢測結果判定，如支原體檢測試劑盒等。血清污染主要包括細菌污染、真菌污染和支原體污染。在細胞培養時(shí)想要確定血清存在細菌污染，可嘗試使用5-10倍濃度青鏈霉素雙抗沖擊培養24-48h；真菌污染的細胞無(wú)法搶救，應立即將細胞瓶進(jìn)行高壓滅菌處理，并徹底消毒培養箱；支原體污染可考慮更換早期代次細胞，或使用商品化支原體去除試劑。

 Q7：細胞形態(tài)不正常、生長(cháng)狀態(tài)異?；蛟鲋乘俾示徛欠衽c血清有關(guān)？

A7：細胞形態(tài)異常需要綜合關(guān)注細胞代次、傳代操作、培養基和血清等諸多因素。如傳代次數過(guò)多或傳代時(shí)間過(guò)晚都有可能影響細胞的生長(cháng)狀態(tài)。有些細胞對血清具有一定適應性，更換新批次血清時(shí)可能出現所含因子水平的差異而導致的細胞生長(cháng)狀態(tài)受到影響的現象，可以通過(guò)血清梯度替換或者增加細胞適應時(shí)間來(lái)解決此類(lèi)問(wèn)題。與此同時(shí)也要關(guān)注基礎培養基和傳代操作等方面是否存在一定問(wèn)題。

 Q8：如何做血清的梯度替換？

A8：當細胞培養實(shí)驗需更換血清品牌時(shí)，做程序性梯度替換方案尤為重要，因為不同品牌的血清所含成分有所差異，血清更換會(huì )使細胞發(fā)生不適，從而出現細胞增殖緩慢或細胞狀態(tài)不佳等情況。建議的梯度替換方法為：完全培養基配置過(guò)程中先用25%新血清與75%原血清進(jìn)行混合，培養傳代1-2次；而后用50%新血清與50%原血清混合培養傳代；再用75%新血清與25%原血清混合培養傳代；最后完全使用新血清培養傳代。

 Q9：培養基中添加血清和抗生素后可長(cháng)期保存嗎?

A9：新鮮培養基中添加血清和抗生素后，建議在2周內使用完。

 Q10：血清的熱滅活是必須的嗎?

A10：實(shí)驗表明，經(jīng)熱滅活處理的血清對細胞生長(cháng)可能僅有微小促進(jìn)或完全沒(méi)有任何作用，甚至通常因高溫處理而損失掉血清中部分營(yíng)養成分從而影響血清質(zhì)量，造成細胞生長(cháng)速率降低。熱滅活過(guò)程中因局部溫度過(guò)高、搖晃不均勻或滅活時(shí)間過(guò)長(cháng)，都會(huì )造成血清品質(zhì)下降，且經(jīng)熱滅活后的血清會(huì )增加發(fā)生蛋白沉淀概率。因此，若非必須血清不需要做熱滅活，而少數對補體敏感的細胞實(shí)驗，如某些免疫學(xué)實(shí)驗或腺病毒包裝等，可酌情對血清進(jìn)行熱滅活操作。

 Q11：血清熱滅活應如何操作？

A11：

1.熱滅活前，必須先將解凍后的血清搖勻，并恢復至室溫；

2.取部分搖勻血清置于50ml離心管中，并準備同規格對照管一個(gè)；

3.對照管內加入血清等體積水；

4.對照管內插入溫度計進(jìn)行溫度預試，當溫度達到 56℃時(shí)將恢復至室溫的血清放入水浴鍋30min；

5.滅活過(guò)程中需要每隔5min輕輕晃動(dòng)搖勻，以保證溫度均一。

 Q12：血清為什么存在批間差？

A12：血清批間差是客觀(guān)存在的，因為血清制品來(lái)源于天然活體，供體牛只的生理狀況、健康狀況均不同，且受飼養環(huán)境的地形、風(fēng)貌、飲食、水源等影響，體內各類(lèi)蛋白、生長(cháng)因子和酶類(lèi)的含量均有巨大差異，所以血清具有含量復雜且不固定的特性，批間差異在所難免，因此批間差異小的血清不僅可以保證血清質(zhì)量，確保細胞培養效果，還能減少由于批間差異帶來(lái)的使用前測試，且避免實(shí)驗結果的不可重復性。